摘要:目的 探究大鼠脓毒症肺损伤与中性粒细胞载脂蛋白(HNL)的相关性。方法 45只大鼠按照随机方法分为对照组、sham组及模型组,模型组建立脓毒症肺损伤大鼠模型,sham组开腹后仅游离盲肠后关腹,不进行结扎和穿刺,对照组为健康大鼠。使用试剂盒检测各组大鼠血清白细胞介素(IL)-6、IL-1β、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)及HNL;血气分析仪检测氧合指数;计算肺组织湿/干比;HE染色观察肺组织病理形态,计算肺损伤评分。结果 对照组及sham组12、24、36 h的IL-6、IL-1β、TNF-α、HNL水平、氧合指数、肺组织湿/干比、肺损伤评分比较,差异均无统计学意义(均P>0.05);与sham组相比,模型组12、24、36 h的IL-6、IL-1β、TNF-α、HNL水平、氧合指数、肺组织湿/干比、肺损伤评分均升高,差异均有统计学意义(均P<0.05)。对照组大鼠12、24、36 h肺组织结构正常,且未见水肿,sham组大鼠12、24、36 h肺组织仅有少量炎症细胞,模型组大鼠12、24、36 h肺组织结构严重破坏,肺泡萎陷,炎症细胞严重浸润,但随着时间延长病理改善。脓毒症肺损伤大鼠中,HNL与IL-6、IL-1β、TNF-α、肺部湿/干比、肺损伤评分呈现正相关性(均P<0.05),与氧合指数呈现负相关性(P<0.05)。结论 脓毒症肺损伤大鼠中HNL显著升高,炎症反应严重,肺组织湿/干比、肺损伤加重,氧合指数降低,且HNL水平与IL-6、IL-1β、TNF-α水平、肺组织湿/干比、肺损伤呈正相关性,与氧合指数呈负相关性。
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脓毒症是重症患者死亡的首要原因,据最新全球疾病负担统计数据显示:每年新发约5 000万例脓毒症患者,其病死率高达20%~40%,严重威胁患者生命安全[1]。脓毒症的发病基础是宿主免疫抗感染作用减弱,随着疾病进展可发生多系统炎症反应和多器官功能衰竭,甚至导致患者死亡[2]。临床上,肺部是脓毒症累及的器官之一,炎症和氧化应激在脓毒症所致的肺损伤中起关键作用,抑制过度产生的炎性反应及应激反应可显著改善肺功能和生存状态[3]。中性粒细胞载脂蛋白(human neutrophil lipocalin, HNL)是中性粒细胞的主要成分,HNL含量的高低与炎症反应过程中的中性粒细胞数量相关,当发生急性细菌感染时,血液中HNL浓度可在1~2 h内明显升高并加重病情[4]。研究[5]表明,HNL水平上升可导致肺部炎症加重,可作为一种细菌感染标志物。脓毒症患者血清中HNL水平显著升高,且预后不良患者血清HNL水平较预后良好患者显著升高,因此,检测血清HNL水平可较好反映脓毒症患者预后情况[6];但HNL与脓毒症肺损伤的关系还有待考量,故本研究通过建立脓毒症肺损伤动物模型,探究HNL与该疾病发生发展的关系。
1、材料与方法
1.1试验动物
无特定病原体(specific pathogen free, SPF)等级(Sprague Dawley)成年45只雄性大鼠,体重(230±20)g,鼠龄3~4周,购自南京卡文斯生物技术有限公司,动物许可证号:SYXK(宁)2022-0007。在温度23~25℃,湿度50%~60%环境下自由进食及饮水。符合动物伦理委员会审批。
1.2主要试剂与仪器
戊巴比妥钠(上海新亚药业有限公司,国药准字H31021725);磷酸盐缓冲液、0.25%胰酶(HyClone公司,货号:SH30256.01、SH30042.01);苏木精-伊红试剂盒(北京索莱宝科技有限公司,货号:G1120);白细胞介素(IL)-1β、IL-6、肿瘤坏死因子(TNF)-α抗体(Abcam公司,货号:ab9722、ab208113、ab286149);HNL试剂盒(上海梵态生物科技有限公司, 货号:FT-PC20691);GAPDH兔多克隆抗体(赛默飞世尔科技有限公司;货号:PA1-16777);辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG(碧云天生物科技有限公司,货号A0208);HBS-1096A酶标仪(上海研卉生物科技有限公司);TDZ4-WS低速台式离心机(湖南湘瑞生物科技有限公司);IX71型倒置拍照显微镜(上海赖氏电子科技有限公司);DYCP-31E电泳仪(北京六一生物科技有限公司)。
1.3分组、脓毒症肺损伤动物建模
45只大鼠按照随机数字方法分为对照组、sham组及模型组,均15只。模型组依据文献[7]建立脓毒症肺损伤模型。大鼠腹腔注射1%戊巴比妥钠(40 mg/kg)麻醉,仰卧位固定后将其腹部毛发脱去并消毒,腹中切口约2 cm,进行盲肠尾部和回盲瓣中间结扎和穿刺,并对其进行轻微按压,将肠腔内物挤至腹腔位置后进行伤口缝合处理。sham组开腹后仅游离盲肠后关腹,不进行结扎和穿刺。造模后大鼠出现竖毛、腹胀和腹腔积液现象,皮毛杂乱无光泽,眼角出现血性分泌物等表现,则表明造模成功。模型组大鼠均建模成功。建模成功后36 h时模型组感染死亡3只,剩余12只。
1.4血清炎症因子水平及HNL水平检测
建模成功后的12、24、36 h,抽取尾部静脉血2 mL,分两次收取。静脉血放入试管,置入离心机以3 000 r/min离心15 min,取血清于-20℃冰箱保存后均严格按照ELISA试剂盒说明书相关规范进行,ELISA法检测大鼠血清IL-6、IL-1β、TNF-α、HNL含量。
1.5氧合指数
建模成功后12、24、36 h,抽取胸主动脉血3 mL,立即采取血气分析,观察动脉血氧分压(partial pressure of arterial blood oxygen, PaO2)值,依据吸入气中的氧浓度分数(fraction of inspirationO2, FiO2)计算氧合指数(PaO2/FiO2)。
1.6肺组织湿/干比
建模成功后12、24、36 h,处死大鼠取右肺组织,采用电子天平称湿重,后放入80℃电热干燥箱中烤18 h,称干重,计算湿/干比,肺组织湿/干比=(湿重-干重)/干重×100%。
1.7 HE染色及病理评分
建模成功后12、24、36 h,取肺组织甲醛固定24 h后,常规脱水,石蜡包埋后,采用5μm厚度切片。将切片置于二甲苯中脱蜡,乙醇脱水(70%→80%→90%→95%),自来水冲洗后,苏木精染色,1%的盐酸-乙醇分化,水洗蓝化,1%的伊红复染,乙醇透水,二甲苯透明及中性树脂封片,显微镜观察病理形态。参照NishinaK的评分标准。0分:最轻微损伤;1分:轻微损伤;2分:中度损伤;3分:重度损伤;4分:最严重损伤。总分作为肺组织的病理评分。
1.8统计学方法
应用SPSS 26.0统计学软件进行分析。计量资料以均数±标准差
表示,多组间比较采用单因素方差分析;两组间对比采用配对样本LSD-t检验;不同时间计量资料比较采用重复测量方差分析;采用Pearson分析相关性;以P≤0.05表示差异具有统计学意义。
2、结果
2.1各组大鼠IL-6、IL-1β、TNF-α水平比较
组间比较:对照组及sham组的12、24、36 h的IL-6、IL-1β、TNF-α水平比较,差异无统计学意义(均P>0.05);与对照组及sham组相比,模型组12、24、36 h的IL-6、IL-1β、TNF-α水平升高,差异均有统计学意义(F值分别为41.720、116.300、25.480,均P<0.05)。时间比较:模型组随着时间的延长,IL-6、IL-1β、TNF-α水平逐渐降低, 差异均有统计学意义(F值分别为3.576、16.100、4.877,均P<0.05)。见表1。
表1各组大鼠IL-6、IL-1β、TNF-α水平比较
2.2各组大鼠HNL水平比较
对照组及sham组的12、24、36 h的HNL水平比较,差异无统计学意义(均P>0.05);与对照组及sham组比较,模型组12、24、36 h的HNL水平升高(均P<0.001);模型组组内比较,与12 h相比,24、36 h的HNL水平降低(均P<0.05),但24 h与36 h比较,差异无统计学意义(P>0.05),见表2。
2.3各组大鼠肺部湿/干比比较
对照组及sham组的12、24、36 h的肺部湿/干比比较,差异无统计学意义(均P>0.05);与对照组及sham组相比,模型组12、24、36 h的肺部湿/干比均升高(均P<0.05);模型组组内比较,与12 h相比,24、36 h的肺部湿/干比降低(均P<0.05),但24 h与36 h比较差异无统计学意义(P>0.05)。见表3。
表2各组大鼠HNL水平比较
表3各组大鼠肺部湿/干比比较
2.4各组大鼠氧合指数比较
对照组及sham组的12、24、36 h的氧合指数比较,差异无统计学意义(P>0.05);与对照组及sham组比较,模型组12、24、36 h的氧合指数均降低(均P<0.05);模型组组内比较,与12 h相比,24、36 h的氧合指数均升高(均P<0.05),但24 h与36 h比较差异无统计学意义(P>0.05),见表4。
表4各组大鼠氧合指数比较
2.5各组大鼠肺组织病理形态及肺组织损伤评分比较
对照组及sham组的肺组织损伤评分均为0分。模型组12、24、36 h的肺组织损伤评分分别为(2.82±0.37)、(2.24±0.30)、(1.89±0.27)分,模拟组与对照组、sham组比较,差异均有统计学意义(均P<0.05)。与12 h比较,24 h肺组织损伤评分降低(P<0.05),与24 h比较,36 h的肺组织损伤评分降低(P<0.05)。HE染色显示:对照组大鼠12、24、36 h肺组织结构正常,且未见水肿,sham组大鼠12、24、36 h肺组织仅有少量炎症细胞,模型组大鼠12、24、36 h肺组织结构严重破坏,肺泡萎陷,炎症细胞严重浸润,但随着时间的延长病理改善,见图1。
2.6脓毒症肺损伤大鼠HNL与IL-6、IL-1β、TNF-α、肺部湿/干比、氧合指数、肺损伤评分相关性分析
脓毒症肺损伤大鼠中,HNL与IL-6、IL-1β、TNF-α、肺部湿/干比、肺损伤评分呈现正相关性(均P<0.05),与氧合指数呈现负相关性(P<0.05),见表5。
图1各组大鼠肺组织病理形态比较(200×)
表5脓毒症肺损伤大鼠HNL与IL-6、IL-1β、TNF-α、肺部湿/干比、氧合指数、肺损伤评分相关性分析
3、讨论
脓毒症引起的肺损伤是一种常见的并发症,严重影响患者预后[8]。中性粒细胞是循环中最丰富的免疫细胞,在宿主防御细菌感染中起着至关重要的作用。然而,在脓毒症期间,过度的中性粒细胞激活,浸润肺部可加剧肺损伤。HNL是一种主要由活化的中性粒细胞释放的小分泌蛋白,参与炎症反应,包括脓毒症[9]。在本研究中,旨在探讨HNL与脓毒症诱导的大鼠肺损伤的相关性,有助于深入了解其潜在机制,并有可能为治疗疾病找到新的治疗靶点。
本研究结果显示,脓毒症肺损伤大鼠中IL-6、IL-1β、TNF-α显著升高,在12 h表达最高,24 h及36 h时逐渐降低。在脓毒症诱发的多器官损伤中,肺部是最受累的器官,肺部是巨噬细胞较集中的器官,而巨噬细胞是炎症细胞因子的主要来源之一,检测炎症因子可较好反映肺组织炎症反应程度[10]。研究[11]表明,IL-6是一种多功能细胞因子,能够促进炎症反应的发生,并参与免疫细胞的活化和增殖,在脓毒症肺损伤中,IL-6的浓度明显升高,与肺损伤的程度呈正相关。脓毒症患者的IL-1β水平也明显升高,IL-1β通过激活炎性细胞和表达细胞黏附分子,进一步加快肺组织破坏[12]。TNF-α是炎症反应中最具代表性的细胞因子之一,能够诱导其他炎症介质的产生,并参与炎症细胞的活化和迁移[13]。本研究认为在脓毒症肺损伤中IL-6、IL-1β、TNF-α水平升高与机体促炎因子及抗炎因子失衡,使肺损伤加重相关。IL-6、IL-1β和TNF-α在脓毒症肺损伤中12 h时达到最高水平,后逐渐降低,可能与随着疾病进展机体免疫细胞会对这些炎症介质进行主动清除,以恢复免疫平衡和减轻炎症反应,进而降低上述炎症因子水平有关。
本研究发现,脓毒症肺损伤大鼠中HNL水平升高、肺部湿/干比、肺损伤增加的同时氧合指数有所降低,说明在脓毒症肺损伤疾病发展过程中HNL水平升高,肺损伤加重,并可影响呼吸功能。HNL是人体重要的载体蛋白超家族成员,常规状态下表达极低,而当机体受到感染后迅速升高,升高时间优于C反应蛋白等常规炎症指标,并在感染控制后表达下降[14-15]。研究[16]表明,在肺源性脓毒症患者中HNL水平显著升高,中性粒细胞的活化可加重肺上皮细胞损伤,同时疾病发展过程中细菌体裂解产物可提高巨噬细胞活性,也升高HNL的表达。另有研究[17-18]表明,在慢性阻塞性肺疾病患者中HNL表达升高,认为是疾病发展过程中机体中性粒细胞激活,进而加快HNL进一步释放,并加重疾病进展。本研究认为脓毒症肺损伤大鼠在12 h时,HNL表达最高,而在24 h和36 h时逐渐降低,可能在疾病早期引起了中性粒细胞的活化,导致HNL的表达升高,随着时间的推移,炎症反应可能逐渐减弱,导致HNL的水平下降。脓毒症发生发展过程中导致炎症介质的释放,如细胞因子、趋化因子等,这些炎症介质可以引起肺血管通透性增加和肺泡水肿,从而导致肺部湿/干比升高[19]。同时,脓毒症发生时导致细菌或病毒产生的毒素释放进入血液,血管扩张血压下降,继而出现肺组织缺血缺氧,损伤肺功能,导致氧合指数下降[20]。本研究结果显示:Pearson相关性分析发现,脓毒症肺损伤大鼠中,HNL与IL-6、IL-1β、TNF-α、肺部湿/干比、肺损伤评分呈现正相关性,与氧合指数呈现负相关性,说明HNL可参与脓毒症肺损伤大鼠炎症反应、肺损伤及呼吸功能。本研究认为HNL是中性粒细胞活化的标志物,而IL-6、IL-1β和TNF-α是炎症介质,HNL激活可引起炎症反应,升高IL-6、IL-1β和TNF-α水平进一步导致肺部湿/干比上升,肺损伤加重。另外,脓毒症肺损伤中HNL升高会导致肺泡通气和血液灌注不匹配,中性粒细胞的活化可能还会导致血管内皮功能障碍和微血栓形成,进一步加重氧合指数的下降。
综上所述,脓毒症肺损伤大鼠中HNL显著升高,炎症反应严重且肺组织湿/干比升高、肺损伤加重,氧合指数降低。且HNL水平与IL-6、IL-1β、TNF-α水平、肺组织湿/干比、肺损伤呈正相关性,与氧合指数呈负相关性。
利益冲突:所有作者均声明不存在利益冲突。
参考文献:
[3]阮本良,邵敏,韩晓洁.脓毒症继发急性肺损伤患者血清CCL25和PARK7表达水平及其临床价值研究[J].现代检验医学杂志,2024,39(1):90-94,117.
[4]陈翠竹,马寅舰.血清HNL、ANC对腹腔细菌感染的鉴别价值研究[J].中外医学研究,2023,21(29):64-67.
[5]李丹,郑裕鹏,邱玉杏,等.HNL、ANXA1 mRNA表达水平与COPD合并肺部感染病原菌分布及药物敏感性的关系[J].热带医学杂志,2019,19(10):1233-1236.
[7]黄立搜,楼黎明,王世强,等.脓毒症大鼠急性肺损伤机制研究[J].浙江中西医结合杂志,2015,25(10):918-920.
基金资助:国家自然科学基金项目(81960342);新疆医科大学创新训练计划项目(S202210760160);
文章来源:郑军,祝木建,李江东,等.大鼠脓毒症肺损伤与中性粒细胞载脂蛋白的相关性研究[J].中国感染控制杂志,2024,23(11):1344-1349.
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脓毒症是重症监护室(ICU)的主要疾病之一,指因感染引起宿主反应失调导致的全身炎症反应综合征,如不及时干预可引起患者多器官衰竭,死亡率可达30%~35%。此类患者病情危重且变化迅速,需进行严密监测和护理,护理工作量较大。了解此类患者的护理工作量及其主要影响因素,对于护理工作量预测和合理配置护理人力具有重要意义。
2025-09-02脓毒症是外科大手术、中重度烧创伤、休克等患者严重并发症之一,也是诱发脓毒症休克、多器官功能障碍的重要诱因。据统计[1],严重脓毒症的死亡率约为30%~70%,随病情进展,易造成多个脏器功能衰竭,进而导致死亡。就当前临床实践现状分析,胃肠道是脓毒症的始动器官、靶器官,肠道屏障功能破坏、动力功能障碍均与脓毒症的发生、发展存在紧密联系。
2025-08-27脓毒症是一种由原发性或继发性感染引起的疾病,其致病微生物包括细菌、真菌、病毒及支原体等,可发生于任何人群,且与年龄、免疫水平、营养状态及受伤情况等密切相关[1]。有数据显示,超过50%的脓毒症患者发病原因为肺部感染,而腹腔感染和泌尿系统感染紧随其后[2]。
2025-08-18脓毒症属感染性疾病,危险系数较高,病情进展快。既往研究[1]表明,脓毒症患儿发病后临床表现与成人存在差异。儿童发生脓毒症后,有意识模糊、烦躁不安、腹泻等相关症状,且多数患儿体温变化以低热为主,若未能及时予以治疗,治疗难度随病情进展逐步升高,危及患儿生命[2]。
2025-08-18现代医学治疗该病主要以对因治疗(包括以抗生素控制感染)及对症支持治疗(包括早期液体复苏、机械通气、肾替代、代谢支持等)为主,若感染得以有效控制,则可避免休克及多器官功能衰竭的出现[3]。然而,耐药菌甚至超级耐药菌越来越多见,使得控制感染的难度加大[4],高热持续会使多器官功能障碍显现,导致病情进展迅速。根据脓毒症临床表现,
2025-08-18脓毒性休克属于急危重症,是由脓毒症诱发的细胞代谢异常、循环衰竭的全身性疾病,即使予以及时的液体复苏、器官支持等治疗,仍有持续性低血压、多器官功能衰竭等发生风险,预后不良,是重症监护室(ICU)内死亡的首要原因。既往研究显示,本病病死率可高达40%。因此,探寻准确、有效的指标预测预后,为临床诊疗提供客观、科学的指导。
2025-08-05脓毒症性心肌病(sepsis-inducedcardiomyopa-thy,SICM)是脓毒症引起的心脏可逆性功能障碍,研究报道,患者伴不同程度SICM,合并SICM可显著升高患者短期死亡率,是预后不良的独立风险因素[1]。SICM的临床表现缺乏特异性,且目前尚无统一的诊断标准,因此,探寻合适的方法准确识别SICM预后不良风险,据此指导临床分层干预对降低患者死亡率至关重要。
2025-07-22脓毒症休克患者存在多器官功能衰竭,多个器官受累,其中胃肠道是最先受损且损伤最为严重的器官之一。脓毒症休克发生时,外周血管广泛扩张,有效循环血量减少,全身各组织细胞呈缺血缺氧状态,肠道上皮细胞出现坏死,细胞凋亡增多,胃肠道黏膜屏障受损,众多炎症物质生成,肠道菌群失调,诱发肠源性败血症以及多器官功能衰竭[2-3]。
2025-07-16脓毒症休克起病急骤,病情进展快速,机体的炎症反应会对多种器官造成较多损伤,严重损害广大居民的身心健康[3-4]。液体复苏为临床治疗此类患者的重要措施,该措施通过增加循环血容量以提升组织的氧气供应,恢复有效循环,减轻因低血流引起的器官损伤[5]。
2025-06-19脓毒症发病机制复杂,严重时可出现败血症性休克(简称败血症)及多脏器功能不全。目前对于败血症患者的血糖控制仍存在较大争议。高血糖对机体细胞的代谢和体内炎症反应有很大影响。对脓毒血症死亡率与各指标关系进行分析,结果显示。
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期刊名称:中国感染控制杂志
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