
摘要:目的 研究罗氟司特对急性心肌梗死(AMI)大鼠的治疗作用及其可能的作用机制。方法 将SD雄性大鼠随机分为假手术组、模型组(AMI)、低剂量实验组(AMI+1 mg•kg-1罗氟司特)、高剂量实验组(AMI+3 mg•kg-1罗氟司特),对照组(AMI+0.9 mg•kg-1倍他乐克),每组10只,连续药物干预10 d后进行AMI造模。造模成功7 d后检测大鼠心功能指标水平,以酶联免疫吸附试验(ELISA)法检测血清因子水平,以试剂盒检测心肌组织氧化应激相关指标水平,以原位末端标记法(TUNEL)法检测大鼠心肌组织心肌细胞凋亡情况,以蛋白质印迹法检测心肌组织蛋白表达水平。结果 假手术组、模型组、低剂量实验组、高剂量实验组和对照组大鼠的左心室射血分数(EF)水平分别为(64.44±3.65)%、(36.12±2.50)%、(41.91±3.92)%、(49.90±2.48)%、(53.28±3.22)%,肌酸激脢同工酶(CK-MB)水平分别为(19.15±0.91)、(77.86±5.92)、(61.58±4.78)、(43.62±4.17)、(39.73±4.08)U•L-1,丙二醛(MDA)含量分别为(2.07±0.23)、(4.57±0.15)、(3.55±0.32)、(2.88±0.27)、(2.46±0.17)nmol•mL-1,TUNEL阳性细胞率分别为(3.96±0.20)%、(16.56±1.82)%、(14.30±0.80)%、(9.73±1.07)%、(7.80±0.56)%,磷酸化腺苷一磷酸活化蛋白激酶(p-AMPK)蛋白相对表达水平分别为1.10±0.09、0.34±0.04、0.59±0.06、0.87±0.05和0.78±0.09,沉默信息调节因子相关酶1(SIRT1)蛋白相对表达水平分别为0.96±0.13、0.33±0.03、0.48±0.06、0.77±0.07和0.69±0.06;模型组的上述指标与假手术组比较,低、高剂量实验组和对照组的上述指标与模型组比较,低、高剂量实验组的上述指标比较,在统计学上差异均有统计学意义(均P<0.05)。结论 罗氟司特可能通过激活AMPK/SIRT1通路抑制炎症反应和氧化应激,减轻心肌细胞凋亡改善AMI大鼠心功能。
急性心肌梗死(acute myocardial infarction, AMI)是由冠状动脉疾病引起的心肌急性缺血性坏死,可导致致死性并发症,严重者可导致死亡[1,2]。罗氟司特是一种磷酸二酯酶4抑制药,由于其具有强大的抗炎和免疫调节特性,被用于治疗严重慢性阻塞性肺疾病[3]。本研究通过构建AMI大鼠模型初步探究罗氟司特在AMI中的治疗效果,并探讨其潜在机制。
1、材料与方法
1材料
动物SD雄性大鼠(SPF级),鼠龄6~7周,体质量180~200 g,中国科学院动物研究所提供。动物生产许可证号:SCXK(京)2021-0012。本实验经北京天坛医院伦理委员会批准(伦理批号:YK2023-271D)。
药品与试剂 罗氟司特,规格:每瓶10 mg,纯度:≥99%,批号:20221014,上海源叶生物科技有限公司生产;酒石酸美托洛尔片,规格:每片25 mg,批号:20220120,批准文号:国药准字H32025391,阿斯利康制药有限公司生产。肌酸激脢同工酶(creatine kinase-MB, CK-MB)酶联免疫吸附试验(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)试剂盒,上海梵态生物科技有限公司生产;大鼠心肌肌钙蛋白Ⅰ(cardiac troponinⅠ,cTnⅠ)ELISA试剂盒,超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)试剂盒,丙二醛(malondialdehyde, MDA)试剂盒,均为上海佰利莱生物科技有限公司生产;白细胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)试剂盒,肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factorα, TNF-α)试剂盒,均为上海钰博生物科技有限公司生产;一步法原位末端标记(terminal-deoxynucleoitidyl transferase mediated nick end labeling, TUNEL)法细胞凋亡检测试剂盒,上海碧云天生物技术研究所生产;裂解的胱天蛋白酶-3(cleaved cysteine aspartate proteinase-3,Cl-caspase-3)、磷酸化腺苷一磷酸活化蛋白激酶(phosphorylation adenosine monophosphate-activated protein kinase, p-AMPK)、AMPK和沉默信息调节因子相关酶1(silencing information regulatory factor-related enzymes 1, SIRT1)一抗,均由美国Abcam公司提供;裂解的胱天蛋白酶-9(cleaved cysteine aspartate proteinase-9,Cl-caspase-9)一抗,上海优宁维生物科技股份有限公司生产;二抗,上海优宁维生物科技股份有限公司生产。
仪器LAT小动物专用高端便携式彩色多普勒超声系统,北京莱艾特科技发展有限公司产品;Revolve Generation 2荧光显微镜,美国Echo公司产品。
2实验方法
2.1模型构建[4]4]
大鼠饲养在SPF动物房中(温度为23~25℃,相对湿度为50%~60%,12 h光暗循环),适应性饲养一周后进行实验。将大鼠进行麻醉(3%戊巴比妥钠,1 mg·kg-1)后,在左侧进行开胸手术,对大鼠冠状动脉左前降支进行结扎(左心耳下1~2 mm)构建心肌梗死模型,并在术后给予8.0×105单位青霉素预防感染(肌内注射,共2 d),术后对大鼠进行心电图监测,根据心电图结果观察各大鼠ST段情况进行模型鉴定。
2.2动物分组与给药方法
适应性喂养1周后,将大鼠随机分为假手术组、模型组、低剂量实验组、高剂量实验组和对照组。低、高剂量实验组大鼠每天灌胃给予1和3 mg·kg-1罗氟司特,对照组每天灌胃给予0.9 mg·kg-1酒石酸美托洛尔片[5]。假手术大鼠根据“2.1”中方法开胸后穿线但不结扎,假手术组和模型组大鼠每天灌胃给予等量0.9%NaCl。连续药物干预10 d后按照“2.1”中方法进行造模,每组10只大鼠。建模成功后7 d检测各组大鼠心功能指标,并大鼠腹主动脉采血后处死大鼠收集心脏组织备用。
2.3动物多普勒超声系统检测心功能相关指标[6]6]
用动物多普勒超声系统对各组大鼠心功能指标进行检测,将超声仪的探头置于各大鼠左心室的乳头肌平面进行检测,记录左心室射血分数(left ventricular ejection fraction, LVEF)、左心室收缩分数(left ventricular fractional shortening, LVFS)、左心室收缩末期内径(left ventricular end-systolic internal diameter, LVIDs)、左心室舒张末期内径(left ventricular end-diastolic internal diameter, LVIDd)指标。
2.4 ELISA法检测血清因子水平[7]7]
各组大鼠检测完心功能指标后,腹主动脉采血,并在室温下静置0.5 h,然后以3 000 r·min-1离心5 min(半径为10 cm),收集血清,然后根据ELISA试剂盒说明书进行操作,检测各组大鼠血清CK-MB、cTnⅠ、IL-1β、TNF-α水平。
2.5试剂盒检测心肌组织氧化应激相关指标[8]8]
取各组大鼠梗死心肌组织并置于冰台上,然后使用0.9%NaCl进行组织匀浆,并根据说明书将组织匀浆与试剂混合后离心10 min,取上清液,然后根据试剂盒操作说明检测梗死心肌组织中SOD和MDA水平。
2.6 TUNEL法检测各组大鼠心肌组织心肌细胞的凋亡情况[9]9]
取各组大鼠心肌组织,用4%多聚甲醛固定后进行常规石蜡包埋并制片(5μm),根据一步法试剂盒操作说明,经脱蜡和水化后加入TUNEL染色液孵育1 h(37℃),然后加入DAPI试剂进行核染色(10 min),结束后封片然后用荧光显微镜观察,并用Image J软件进行计数。
2.7蛋白质印迹法检测心肌组织Cl-caspase-3、Cl-caspase-9、p-AMPK和SIRT1蛋白的表达水平[10]10]
收集各组大鼠心肌组织,加入裂解液提取总蛋白,以二喹啉甲酸法鉴定提取的蛋白浓度后取50μg蛋白进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,结束后转至聚偏二氟乙烯膜并在室温下封闭2 h(5%脱脂奶粉),然后加入Cl-caspase-3(1∶500)、Cl-caspase-9(1∶1 000)、p-AMPK(1∶1 000)、AMPK(1∶1 000)、SIRT1(1∶1 000)一抗试剂,4℃孵育过夜,然后TBST清洗3次后加入二抗(1∶2 000)室温孵育,ECL显影后采集图像并以β-actin为内参进行灰度值分析。
3统计学处理
用SPSS 26.0软件进行统计分析。数据用
表示,2组间比较用独立样本t检验,多组间比较用单因素方差分析。
2、结 果
1罗氟司特对心肌梗死大鼠心功能相关指标的影响
低、高剂量实验组分别给予1和3 mg·kg-1罗氟司特,对照组给予0.9 mg·kg-1酒石酸美托洛尔片,假手术组和模型组均给予等量0.9%NaCl。
与假手术组比较,模型组大鼠EF、FS水平均显著降低,LVIDs、LVIDd水平均显著提高(均P<0.05);与模型组比较,低、高剂量实验组和对照组大鼠EF、FS水平均显著提高(均P<0.05),LVIDs、LVIDd水平均显著下降(均P<0.05);与低剂量实验组比较,高剂量实验组大鼠EF、FS水平均显著提高(均P<0.05),LVIDs、LVIDd水平均显著下降(均P<0.05)。结果见表1。
2罗氟司特对心肌梗死大鼠血清相关指标的影响
与假手术组比较,模型组大鼠血清CK-MB、cTnⅠ、IL-1β、TNF-α水平均显著提高(均P<0.05);与模型组比较,低剂量实验组、高剂量实验组和对照组大鼠血清CK-MB、cTnⅠ、IL-1β、TNF-α水平均显著下降(均P<0.05);与低剂量实验组比较,高剂量实验组大鼠血清CK-MB、cTnⅠ、IL-1β、TNF-α水平均显著下降(均P<0.05),见表2。
表1各组大鼠心功能指标的比较
表2各组大鼠血清指标的比较
3罗氟司特对心肌梗死大鼠SOD和MDA水平的影响
与假手术组比较,模型组大鼠SOD水平均显著降低,MDA水平均显著提高(均P<0.05);与模型组比较,低剂量实验组、高剂量实验组和对照组大鼠SOD水平均显著提高,MDA水平均显著下降(均P<0.05);与低剂量实验组比较,高剂量实验组大鼠SOD水平显著提高,MDA水平显著下降(均P<0.05),见表3。
4罗氟司特对心肌梗死大鼠心肌组织心肌细胞凋亡的影响
与假手术组比较,模型组大鼠阳性细胞率及Cl-caspase-3和Cl-caspase-9蛋白相对表达水平均显著提高(均P<0.05);与模型组比较,低剂量实验组、高剂量实验组和对照组大鼠阳性细胞率及Cl-caspase-3和Cl-caspase-9蛋白相对表达水平均显著下降(均P<0.05);与低剂量实验组比较,高剂量实验组大鼠TUNEL阳性细胞率及Cl-caspase-3和Cl-caspase-9蛋白相对表达水平均显著下降(均P<0.05),见表4。
5罗氟司特对心肌梗死大鼠AMPK信号通路的影响
与假手术组比较,模型组大鼠p-AMPK和SIRT1蛋白相对表达水平均显著下降(均P<0.05);与模型组比较,低剂量实验组、高剂量实验组和对照组大鼠SIRT1蛋白相对表达水平均显著升高(均P<0.05);与低剂量实验组比较,高剂量实验组大鼠SIRT1蛋白相对表达水平均进一步显著增加(均P<0.05),见表5。
表3各组大鼠超氧化物歧化酶(SOD)和丙二醛(MDA)水平的比较
表4各组大鼠心肌细胞阳性细胞率及凋亡蛋白表达的比较
表5各组大鼠心肌组织腺苷一磷酸活化蛋白激酶(AMPK)通路蛋白表达的比较
3、讨 论
本研究结果发现,罗氟司特治疗后AMI大鼠心功能指标LVEF、LVFS、LVIDs、LVIDd水平均得到改善。此外,罗氟司特治疗后还显著降低了AMI大鼠血清CK-MB、cTnⅠ水平,提示罗氟司特可显著改善AMI大鼠心功能,说明罗氟司特预处理在AMI发生时具有一定的保护作用[10]。
本研究中,经罗氟司特治疗后,AMI大鼠血清IL-1β、TNF-α炎性因子及MDA水平均显著降低,SOD水平显著提高,且高剂量的罗氟司特对AMI大鼠炎性因子和氧化指标的改善作用优于低剂量组,同时高、低剂量罗氟司特对AMI心肌细胞凋亡率及促凋亡相关蛋白Cl-caspase-3和Cl-caspase-9水平均具有不同程度的抑制作用,提示罗氟司特可通过抑制炎症反应和氧化应激改善AMI大鼠心肌细胞凋亡。
AMPK信号是细胞内的能量传感器,研究表明激活AMPK信号通路可以减少线粒体损伤,AMPK的激活可抑制线粒体分裂,从而阻止线粒体通透性转换孔的打开,有助于细胞存活[11]。本研究中,罗氟司特处理后,AMI大鼠心肌组织中p-AMPK及SIRT1表达均提高,提示罗氟司特治疗后可能通过激活AMPK/SIRT1通路发挥作用。
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文章来源:宋辉,徐玢,郭伟.罗氟司特对急性心肌梗死大鼠心肌损伤的影响[J].中国临床药理学杂志,2024,40(03):383-387.
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