摘要:采用单因素实验和响应面法优化了新疆沙枣叶多酚的超声辅助提取工艺,并通过测定沙枣叶多酚对DPPH自由基的清除能力及对小鼠血清中丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、总抗氧化能力(T-AOC)的影响评价其抗氧化活性。结果表明,沙枣叶多酚的最佳提取工艺为:料液比1∶40(g∶mL)、乙醇体积分数58%、提取时间21 min、提取功率250 W,在此条件下,多酚含量为36.45 mg·g-1;当浓度为0.20 mg·mL-1时,沙枣叶多酚和VC对DPPH自由基的清除率分别为90.3%、96.5%;与空白对照组比较,模型对照组小鼠血清中MDA水平极显著升高(P<0.01),SOD、GSH-Px、T-AOC的水平均极显著降低(P<0.01),且模型对照组的肾脏系数和肝脏系数与空白对照组差异极显著(P<0.01);与模型对照组比较,沙枣叶多酚高剂量组血清中MDA水平极显著降低(P<0.01),SOD、GSH-Px、T-AOC的水平均极显著升高(P<0.01),且肾脏系数和肝脏系数与模型对照组无显著差异(P>0.05)。
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沙枣(Elaeagnus angustifoliaL.)又名七里香、桂香柳等,在新疆作为防风林树种广泛种植。沙枣树的果实、花、叶等均具有较高的营养价值[1],被誉为“宝树”。近年来,随着人们健康意识的增强,对具有提升免疫功能等特性的功能性植物食品的需求明显增加[2]。多酚类化合物是广泛存在于中草药或植物食品中的生物活性分子[3],具有抗氧化、抗诱变、抗肿瘤、抗辐射、抑菌[4]、抗腹泻[5]、抗炎镇痛等作用。赵仲霞等[6]研究发现,黑糖总多酚的体外抗氧化活性高于没食子酸标准品,适于日常食用。李静等[7]研究发现,短时黑蒜多酚具有较强的体外抗氧化活性,可进一步开发为功能性食品。杨子明等[8]研究了荔枝皮多酚对小鼠体内抗氧化活性的影响,发现荔枝皮多酚及其酸解、碱解产物均具有一定的抗氧化活性。刘迪等[9]研究发现,核桃青皮多酚具有显著的体内抗氧化活性。目前,关于沙枣叶多酚提取工艺的研究较少,因此,作者采用超声辅助法提取新疆沙枣叶多酚,在单因素实验的基础上,利用响应面法对沙枣叶多酚的提取工艺进行优化,并通过测定沙枣叶多酚对DPPH自由基的清除能力及对小鼠血清中丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、总抗氧化能力(T-AOC)的影响评价其抗氧化活性,拟为新疆沙枣叶的资源化开发利用提供理论依据。
1、实验
1.1 材料、试剂与仪器
沙枣叶(粉碎,过80目筛),采自新疆克拉玛依白碱滩,经新疆医科大学鉴定为胡颓子科植物沙枣(Elaeagnus angustifoliaL.)的干燥叶。SPF级昆明小鼠,体重20~25 g, 合格证号:SCXK(新)2018-002,新疆医科大学实验动物中心。
乙醇、无水碳酸钠,天津致远化学试剂有限公司;福林酚,上海麦克林生化科技有限公司;没食子酸对照品,北京索莱宝科技有限公司;丙二醛测试盒(A003-1)、总抗氧化能力测试盒(A015-2-1)、超氧化物歧化酶测试盒(A001-3)、谷胱甘肽过氧化物酶测试盒(A005-1),南京建成生物工程研究所。
UV-2700型紫外可见分光光度计,日本岛津公司;HH-S4型数显恒温水浴锅,江苏金怡仪器科技有限公司;500A型多功能粉碎机,永康松青五金厂;AB135-S型分析天平,梅特勒-托利多仪器有限公司;KQ500DE型超声波清洗器,昆山超声仪器有限公司;全波长酶标仪,赛默飞世尔(上海)仪器有限公司。
1.2 沙枣叶多酚的提取
称取沙枣叶粉末0.5 g, 按料液比1∶50(g∶mL,下同)加入40%乙醇,200 W超声提取1 h, 过滤,即得沙枣叶多酚提取液。
1.3 沙枣叶多酚含量的测定
标准曲线的绘制:用纯化水配制浓度为0.1 mg·mL-1的没食子酸对照溶液;分别移取0.3 mL、0.4 mL、0.5 mL、0.6 mL、0.7 mL的没食子酸对照溶液于10 mL容量瓶中,加入1.5 mL 20%的Na2CO3溶液和0.5 mL福林酚试剂,定容;置于75 ℃恒温水浴锅中,反应10 min后,测定760 nm处吸光度。以没食子酸浓度(c)为横坐标、吸光度(A)为纵坐标绘制标准曲线[10](图1),拟合得线性回归方程:A=114.6c-0.0914(R2=0.9987)。
吸取1.0 mL稀释后的沙枣叶多酚提取液,按上述方法测定760 nm处吸光度,根据标准曲线方程计算多酚含量。
1.4 沙枣叶多酚提取工艺的优化
以沙枣叶多酚含量为评价指标,采用单因素实验考察料液比(1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50,g∶mL)、乙醇体积分数(20%、30%、40%、50%、60%)、提取时间(20 min、30 min、40 min、50 min、60 min)、提取功率(100 W、200 W、300 W、400 W、500 W)对沙枣叶多酚含量的影响。
图1 没食子酸的标准曲线
选择料液比(A)、乙醇体积分数(B)、提取时间(C)和提取功率(D)为考察因素,利用Design-Expert 13软件设计4因素3水平响应面实验,进一步优化沙枣叶多酚的提取工艺。
1.5 沙枣叶多酚的体外抗氧化活性评价
1.5.1 溶液的制备
VC溶液:精密称取107.04 mg VC,置于100 mL容量瓶中,用蒸馏水溶解并定容至刻度,避光处保存,备用。
DPPH自由基溶液:精密称取4.42 mg DPPH,置于100 mL棕色容量瓶中,用无水乙醇溶解并定容至刻度,避光处保存,备用。
供试溶液:称取沙枣叶粉末约1 g, 按料液比1∶40加入58%乙醇,250 W超声21 min, 过滤,收集上清液,即得供试溶液。
1.5.2 沙枣叶多酚对DPPH自由基的清除能力
将供试溶液用58%乙醇稀释至浓度(mg·mL-1)分别为0.001、0.005、0.01、0.025、0.05、0.10、0.15、0.20的样品溶液;移取各浓度样品溶液1 mL于试管中,加入DPPH自由基溶液1 mL,混匀,避光反应30 min, 测定517 nm处吸光度;以VC为对照,平行测定3次。按式(1)计算DPPH自由基清除率:
清除率
式中:A1为1 mL DPPH+1 mL样品溶液的吸光度;A2为1 mL DPPH+1 mL 58%乙醇的吸光度;A3为1 mL样品溶液+1 mL 58%乙醇的吸光度。
1.6 沙枣叶多酚的体内抗氧化活性评价
1.6.1 样品制备
称取适量沙枣叶粉末,按料液比1∶40加入58%乙醇,250 W超声21 min, 过滤,收集上清液,浓缩蒸干,得到干浸膏,制成0.16 g·mL-1、0.08 g·mL-1、0.04 g·mL-1的混悬液,必要时可微加热以加速溶解。临用前配制,每次灌胃前摇匀后使用。
1.6.2 模型的建立
取SPF级雄性昆明小鼠50只,随机均分成5组:1个空白对照组,给予生理盐水0.01 mL·g-1;1个模型对照组,给予生理盐水0.01 mL·g-1;3个给药组,即低剂量组(0.4 g·kg-1)、中剂量组(0.8 g·kg-1)、高剂量组(1.6 g·kg-1),每日灌胃1次,每只小鼠灌胃量均为0.01 mL·g-1,连续灌胃15 d。末次灌胃后,模型对照组和3个给药组禁食16 h (过夜),然后一次性灌胃给予50%乙醇(12 mL·kg-1),6 h后摘取眼球取血,立即脱颈处死,迅速摘取心脏、肝脏、脾脏和肾脏,用生理盐水洗净,吸干水分并称重,按式(2)计算脏器系数;全血4 000 r·min-1离心10 min后取血清,-80 ℃冻存。空白对照组不作处理,不禁食取血。
脏器系数
1.6.3 指标检测
MDA含量反映了细胞脂质过氧化程度,常被用作生物脂质过氧化反应的检测指标[11]。SOD是机体主要的抗氧化酶,保护细胞免受氧化应激损伤[12]。GSH-Px是体内重要的一种催化酶,可阻断脂质过氧化反应,减少过氧化产物的生成,从而保护细胞膜[13]。T-AOC是评估机体氧化应激的重要指标[14]。按照试剂盒说明书检测血清中MDA、SOD、GSH-Px、T-AOC的表达水平。
1.7 数据处理
实验结果以平均值±标准差
表示,使用SPSS 27.0软件行统计分析,组间比较采用单因素方差分析。
2、结果与讨论
2.1 方法学考察
精密度实验:移取适量没食子酸对照溶液,按1.3方法测定吸光度,重复测定6次, 其RSD值为0.352%。表明该仪器精密度良好。
重复性实验:称取6份沙枣叶粉末各0.5 g, 按1.2方法制备沙枣叶多酚提取液,按1.3方法测定吸光度, 其RSD值为3.885%。表明该方法的重复性较好。
稳定性实验:取0.5 mL沙枣叶多酚提取液,按1.3方法分别在15 min、30 min、60 min、90 min、120 min测定吸光度,其RSD值为1.064%。表明沙枣叶多酚提取液在120 min内稳定性较好。
加标回收率实验:按1.2方法平行制备沙枣叶多酚提取液6份,分别加入0.1 mg·mL-1的没食子酸对照溶液,按1.3方法测定吸光度,计算得到平均加标回收率为97.7%, RSD值为1.75%,符合药典规定。表明该方法的准确度较高。
2.2 单因素实验结果
2.2.1 料液比对沙枣叶多酚含量的影响(图2)
图2 料液比对沙枣叶多酚含量的影响
由图2可知,随着料液比的减小,即提取溶剂用量的增加,沙枣叶多酚含量先升高后降低并趋于稳定,当料液比为1∶30时,多酚含量最高。说明溶剂用量过多会抑制多酚的溶出[15]。因此,选择1∶30作为响应面实验料液比的中心点。
2.2.2 乙醇体积分数对沙枣叶多酚含量的影响(图3)
图3 乙醇体积分数对沙枣叶多酚含量的影响
由图3可知,随着乙醇体积分数的增加,沙枣叶多酚含量逐渐升高,当乙醇体积分数为50%时,多酚含量最高,为29.804 mg·g-1;继续增加乙醇体积分数,多酚含量降低,可能是因为,乙醇体积分数过大时,沙枣叶多酚的溶解度随着溶剂极性降低而下降,导致多酚含量降低[16]。 因此,选择50%作为响应面实验乙醇体积分数的中心点。
2.2.3 提取时间对沙枣叶多酚含量的影响(图4)
图4 提取时间对沙枣叶多酚含量的影响
由图4可知,随着提取时间的延长,沙枣叶多酚含量逐渐升高,当提取时间为30 min时,多酚含量达到最高,为33.469 mg·g-1;继续延长提取时间,多酚含量逐渐下降,可能是由于,提取时间延长时,一方面沙枣叶多酚的结构被破坏[17],另一方面沙枣叶中的其他杂质被溶出,导致多酚含量降低;当提取时间进一步延长至50 min后,多酚含量呈小幅升高,可能是由于,鞣质和黄酮类化合物均含有多酚结构,提取时间过长时,会促进这些物质的释放,导致多酚含量小幅升高。因此,选择30 min作为响应面实验提取时间的中心点。
2.2.4 提取功率对沙枣叶多酚含量的影响(图5)
图5 提取功率对沙枣叶多酚含量的影响
由图5可知,当提取功率为300 W时,沙枣叶多酚含量达到最高,为33.207 mg·g-1;继续增大提取功率,多酚含量持续下降。可能是由于,超声处理后沙枣叶结构变得松散,促使多酚类物质释放[15];但提取功率过大时,多酚结构被破坏,导致多酚含量降低[18]。因此,选择300 W作为响应面实验提取功率的中心点。
2.3 响应面实验结果
2.3.1 响应面实验设计与结果(表1)
表1 响应面实验设计与结果
2.3.2 模型方程的建立与方差分析
利用Design-Expert 13软件对表1数据进行拟合,得到回归模型方程为:Y=30.20+0.581A+0.5348B+0.9018C-0.5127D+0.6555AB+0.6545AC-0.1745AD-1.72BC-0.4087BD+0.3438CD-0.3866A2-1.78B2+0.7699C2-0.5386D2。
回归模型的方差分析如表2所示。
表2 回归模型的方差分析
由表2可知,该模型的P<0.0001,极显著;失拟项的P=0.2654>0.05,不显著,说明实验误差较小,该模型拟合较好;该模型的R
=0.8951,说明实际值与理论预测值的拟合程度较好;变异系数CV=4.63%<10%,说明实验结果的精确度和可靠性较高,可以利用该模型来最大限度地提取沙枣叶多酚。回归模型的显著性检验显示,一次项A、二次项B2对沙枣叶多酚含量的影响极显著,一次项C、交互项BC的影响显著。由F值可知,各因素对沙枣叶多酚含量影响的大小顺序为:A(料液比)>C(提取时间)>B(乙醇体积分数)>D(提取功率)。
2.3.3 各因素交互作用的响应面分析
各因素交互作用对沙枣叶多酚含量影响的响应面图及等高线图如图6所示。
响应曲面坡度越大,说明其对应的因素对响应值的影响越大;等高线越接近椭圆形,两因素之间的交互作用越显著[19]。由图6可知,乙醇体积分数与提取时间交互作用的响应曲面坡度较陡峭,表明两者交互作用显著(P<0.05)。根据表2中各项的F值,可知两者交互作用对沙枣叶多酚含量影响的大小顺序为:BC>AB>AC>BD>CD>AD,其中乙醇体积分数与提取时间的交互作用的影响最大。
图6 各因素交互作用对沙枣叶多酚含量影响的响应面图及等高线图
2.3.4 最佳工艺条件的预测及模型验证
利用Design-Expert 13 软件分析得到沙枣叶多酚的最佳超声提取工艺为:料液比1∶39.6、乙醇体积分数57.688%、提取时间21.32 min、提取功率245.61 W,沙枣叶多酚含量的预期值为36.21 mg·g-1。考虑实际情况,将最佳提取工艺调整为:料液比1∶40、乙醇体积分数58%、提取时间 21 min、提取功率250 W, 在此条件下进行3次平行验证实验,沙枣叶多酚的平均含量为 36.45 mg·g-1,与预期值接近,验证了该模型的准确性。
2.4 沙枣叶多酚的体外抗氧化活性
沙枣叶多酚对DPPH自由基的清除能力如图7所示。
由图7可知,随着浓度的增加,沙枣叶多酚对DPPH自由基的清除率整体呈升高趋势。当浓度为0.20 mg·mL-1时,沙枣叶多酚、VC对DPPH自由基的清除率相差不大,分别为90.3%、96.5%。说明沙枣叶多酚对DPPH自由基有较强的清除能力。
2.5 沙枣叶多酚的体内抗氧化活性
2.5.1 沙枣叶多酚对小鼠血清中 MDA、SOD、GSH-Px、T-AOC 水平的影响(表3)
图7 沙枣叶多酚对DPPH自由基的清除能力
表3 沙枣叶多酚对小鼠血清中 MDA、SOD、GSH-Px、T-AOC水平的影响
2.5.2 沙枣叶多酚对小鼠脏器系数的影响(表4)
肾脏系数、肝脏系数可以在一定程度上反映药物对肾脏、肝脏的损害,如果2个指标均降低,说明代谢能力受药物影响[8]。由表4可知,模型对照组小鼠的肾脏系数和肝脏系数与空白对照组差异极显著 (P<0.01),说明小鼠的肾脏和肝脏受到了一定损害,代谢能力受到影响。高、中、低剂量组小鼠的肾脏系数和肝脏系数与模型对照组无显著差异(P>0.05)。
表4 沙枣叶多酚对小鼠脏器系数的影响
3、结论
在单因素实验的基础上,采用响应面法优化了沙枣叶多酚的提取工艺。确定最佳提取工艺为:料液比1∶40(g∶mL)、乙醇体积分数 58%、提取时间21 min、提取功率250 W,在此条件下,沙枣叶多酚含量为36.45 mg·g-1。沙枣叶多酚具有较强的体内外抗氧化活性。当浓度为0.20 mg·mL-1时,沙枣叶多酚对DPPH自由基的清除率为90.3%;与模型对照组比较,沙枣叶多酚高剂量组小鼠血清中MDA水平极显著降低(P<0.01),SOD、GSH-Px、T-AOC的水平均极显著升高(P<0.01),且肾脏系数和肝脏系数与模型对照组无显著差异(P>0.05)。
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基金资助:国家自然科学基金地区科学基金项目(81860772); 新疆维吾尔自治区自然科学基金项目(2022D01C453);
文章来源:张小庆,苏伟航,孙芸,等.响应面法优化沙枣叶多酚提取工艺及体内外抗氧化活性研究[J].化学与生物工程,2024,41(09):15-22.
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