摘要:目的探究mi R-449c-5p对卵巢癌细胞紫杉醇(paclitaxel, PTX)耐药影响及潜在调控机制。方法 q RT-PCR检测mi R-449c-5p表达,蛋白免疫印迹分析ABCC1的蛋白表达。将mi R-449c-5p、mi R-NC、ABCC1过表达载体以及pc DNA 3.1(+)载体转染PTX耐药的卵巢癌细胞A2780/PTX和SKOV3/PTX,利用CCK-8法以及transwell实验分析细胞表型变化。双荧光素酶报告实验鉴定mi R-449c-5p和ABCC1之间的联系。移植瘤鼠模型实验体内分析mi R-449c-5p和PTX联合处理对肿瘤生长的影响。结果 与HOSEPi C细胞相比,mi R-449c-5p表达在A2780和SKOV3细胞中较低(P <0.05),在A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞中最低(P <0.05)。mi R-449c-5p在A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞中靶向ABCC1。与mi R-NC转染组相比,mi R-449c-5p转染组中IC50值降低、侵袭细胞数减少(P <0.05);和mi R-449c-5p和pc DNA共转染组比较,mi R-449c-5p和ABCC1共转染组的PTX的IC50值显著增加、侵袭细胞数增加(P <0.05)。和mi R-NC+PBS组比较,鼠模型移植瘤体积在mi R-NC+PTX组和mi R-449c-5p+PBS组显著降低(P <0.05),与mi R-NC+PTX组比较,移植瘤体积在mi R-449c-5p+PTX组显著降低(P <0.05)。结论 Mi R-449c-5p通过调控ABCC1提高卵巢癌对PTX的敏感性。
卵巢癌具有病死率高,转移率高的特点[1]。卵巢癌患者通常在晚期阶段确诊,并会出现化疗药物的耐药性[2]。紫杉醇(paclitaxel,PTX)是一类能够稳定微管的紫杉烷,常用来治疗卵巢癌,但其在卵巢癌患者中出现的耐药性使得它的疗效受限。微小RNAs(micro RNAs,mi RNAs)能够在身体不同组织和体液中表达,是医学研究的一个重要领域[3]。这些小非编码RNAs能够通过结合m RNA识别位点在转录后水平影响m RNA表达[4]。Mi R-449c-5p是mi RNAs家族成员,目前没有研究分析PTX在卵巢癌细胞中耐药机制是否涉及mi R-449c-5p。因此,本研究旨在探讨mi R-449c-5p对卵巢癌细胞紫杉醇耐药影响及潜在调控机制。
1、材料与方法
一、主要试剂和仪器
Mc Coy’s 5a培养基、荧光素酶检测试剂、Lipo脂质体3000、CCK-8试剂、多聚甲醛、结晶紫、羊抗兔Ig G抗体、DMEM培养基和RPMI-1640培养基购自北京索莱宝生物;mi RNA反转录试剂盒、Green q PCR Super Mix、Fast Multi Site Mutagenesis System、Cell Apoptosis Detection Kit、Easy Pure®mi RNA Kit购自北京全式金生物;ABCC1一抗抗体(#PA5-30594)和实时荧光定量PCR系统购自美国Thermo Fisher公司;卵巢癌细胞系A2780和SKOV3购自武汉普诺赛生物;稳定表达mi R-449c-5p的SKOV3/PTX细胞系、实验中所用定量引物、mi R-449c-5p模拟物、模拟物对照和ABCC1过表达载体购自上海吉满生物;人卵巢上皮细胞HOSEPi C购自武汉华拓生物;PTX抗性SKOV3细胞(SKOV3/PTX)购自上海信裕生物;PTX抗性A2780细胞(A2780/PTX)购自上海传秋生物;BALB/c裸鼠购自湖南斯莱克景达有限公司。
二、实验方法
1. 细胞处理与分组:
依据Lipo脂质体3000说明书将脂质体3000和mi R-449c-5p模拟物、ABCC1过表达质粒以及相应的对照转染到A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞中,分为miR-NC组、mi R-449c-5p组、mi R-449c-5p+pc DNA组和mi R-449c-5p+ABCC1组。转染48 h后,收集每孔细胞用于相应的功能分析实验。
2. Mi RNA表达定量分析:
收集培养的卵巢癌细胞,运用Easy Pure®mi RNA Kit提取mi RNA,取适量提取的mi RNA,根据mi RNA反转录试剂盒说明书合成c DNA。随后在实时荧光定量PCR系统上分析目的mi RNA表达。数据利用2–ΔΔCt法分析。
3. PTX抗性实验:
PTX对A2780、A2780/PTX、SKOV3和SKOV3/PTX细胞抗性利用CCK-8实验分析。将以上细胞正常培养24 h后与不同浓度的PTX孵育2 d,利用磷酸缓冲液洗涤细胞两次后,每孔中添加CCK-8试剂并孵育3 h。利用酶标仪分析样品。最终计算PTX抑制细胞生长50%(half maximal inhibitory concentration,IC50)的浓度以分析PTX抗性。
4. Transwell实验:
不同转染的A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞接种到24孔的Transwell上室,在Transwell下室加有相应含有高血清的培养基。培养2 d后,于倒置显微镜下分析染色细胞。
5. Mi R-449c-5p和ABCC1关系鉴定:
在线数据库预测mi R-449c-5p和ABCC1互补位点。野生型报告质粒WT-ABCC1 3’UTR和突变型报告质粒MUT-ABCC1 3’UTR根据预测的互补位点构建。根据实验目的将报告质粒转染细胞,最终用荧光素酶检测试剂检测荧光素酶活性。
6. ABCC1蛋白表达分析:
从培养的细胞中提取蛋白,将相应体积的样品经SDS-PAGE电泳。分离的条带经全蛋白质转印系统转移到PVDF膜上,随后与ABCC1一抗抗体孵育。化学发光成像分析仪分析膜上条带。
7. 移植瘤鼠模型实验:
将稳定表达mi R-449c-5p或者mi R-NC的SKOV3/PTX细胞系分别皮下注射到12只6周龄雌性BALB/c无胸腺裸鼠背部右侧。注射后7 d,每3 d注射磷酸缓冲液或者PTX到相应组鼠的腹腔直到实验结束。22 d后将全部小鼠安乐死,收集移植瘤用于后续试验分析。
三、统计学分析
数据运用Graph Pad Prism软件分析,结果以均值±标准差表示。两组间差异利用t检验和方差分析。P<0.05为差异有统计学意义。
2、结果
一、Mi R-449c-5p在PTX耐药的卵巢癌细胞株中表达下调
PTX的IC50值在A2780/PTX(768.00±39.36)和SKOV3/PTX细胞(984.00±74.73)中比在A2780(143.50±44.55)和SKOV3细胞(204.33±40.02)中高(P<0.05)。与HOSEPi C细胞比较,mi R-449c-5p表达在A2780(1.00±0.10)vs (0.70±0.08)和SKOV3细胞(1.00±0.10) vs (0.59±0.07)中较低(P<0.05),在A2780/PTX(1.00±0.10) vs(0.27±0.07)和SKOV3/PTX细胞(1.00±0.10) vs(0.22±0.07)中最低(P<0.05)。
二、Mi R-449c-5p过表达提高了A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞对PTX的敏感性
Mi R-449c-5p表达在mi R-449c-5p转染的A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞中比在mi R-NC转染的细胞中高(P<0.05)见图1。PTX在mi R-449c-5p转染组的IC50值低于mi R-NC转染组的(P<0.05),见图2。与mi R-NC转染组相比,mi R-449c-5p转染组中侵袭细胞数减少(P<0.05),见图3。
图1 miR-449c-5p的表达分析
图2 PTX在A2780/PTX IC50值检测
三、Mi R-449c-5p调控ABCC1
mi R-449c-5p包含ABCC1结合位点。并且数据显示mi R-449c-5p和WT-ABCC1 3’UTR转染的A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞荧光素酶活性被显著抑制(P<0.05),但是在mi R-449c-5p和MUT-ABCC1 3’UTR共转染的细胞中没有明显变化。
图3 mi R-449c-5p过表达在A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞中对细胞侵袭的影响
Fig 3 The effect of overexpression of mi R-449c-5p on cell invasion in A2780/PTX and SKOV3/PTX cells
四、Mi R-449c-5p通过调控ABCC1介导A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞对PTX的敏感性
ABCC1在mi R-449c-5p转染组的蛋白表达显著低于mi R-NC转染组的(P<0.05),但是在mi R-449c-5p+ABCC1转染组的显著高于mi R-449c-5p+pc DNA转染组的(P<0.05),见图4。并且和mi R-NC转染组比较,mi R-449c-5p转染组中PTX的IC50值显著降低、侵袭细胞数增加(P<0.05);和mi R-449c-5p+pc DNA转染组比较,mi R-449c-5p+ABCC1转染组的PTX的IC50值显著增加、侵袭细胞数增加(P<0.05)(图5~图6)。
图4 ABCC1的表达分析
图5 PTX在A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞中的IC50值检测
图6 mi R-449c-5p和ABCC1过表达在A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞中对细胞侵袭的影响
五、Mi R-449c-5p在移植瘤鼠模型中提高了PTX的敏感性
与miR-NC+PBS组比较,鼠模型移植瘤体积在miR-NC+PTX组和miR-449c-5p+PBS组显著降低(P<0.05),与mi R-NC+PTX组比较,移植瘤体积在mi R-449c-5p+PTX组显著降低(P<0.05),见图7。与mi R-NC+PBS组比较,mi R-449c-5p+PBS组中mi R-449c-5p表达显著增加(P<0.05);与mi R-NC+PTX组比较,mi R-449c-5p+PTX组中mi R-449c-5p表达显著增加(P<0.05),见图8。
图7 移植瘤体积分析
图8 mi R-449c-5p和PTX共处理对mi R-449c-5p表达的影响
3、讨论
研究指出PTX在卵巢癌细胞中的敏感性和mi RNAs有关。例如,Zhan等[5]指出mi R-149低表达增加卵巢癌细胞对PTX的抗性,并且此相关机制涉及mi R-149对骨髓分化因子88的负调控。另外mi R-574-3p表达下调有助于卵巢癌细胞对PTX抗性,且色素框同源物2表达下调可以缓解mi R-574-3p抑制剂对PTX有抗性的卵巢癌细胞增殖和侵袭调控的影响[6]。Mi R-449c-5p是一种抑癌基因,其异常表达可能和胶质母细胞瘤[7]以及肝细胞癌[8]恶性有关。但其在卵巢癌疾病发展尤其是在卵巢癌对PTX耐药性分子机制方面暂未见文献报道,故本研究围绕此问题开展。卵巢癌细胞的分析数据展示mi R-449c-5p在对PTX有抗性的卵巢癌细胞中表达下调,并且mi R-449c-5p模拟物转染后抑制了对PTX有抗性的卵巢癌细胞侵袭。CCK-8实验以及移植瘤鼠模型实验结果揭示mi R-449c-5p过表达有助于提高卵巢癌细胞对PTX敏感性。
ABCC1是ABC转运蛋白的C亚家族成员,具有将化疗药物排出癌细胞的能力[9]。研究表明ABCC1能够通过circ SETDB1/mi R-508-3p/ABCC1通路[10]和LINC01118/mi R-134/ABCC1通路[11]提高卵巢癌对PTX的耐药性。本研究证明miR-449c-5p调控ABCC1。ABCC1高表达能够缓解miR-449c-5p对A2780/PTX和SKOV3/PTX细胞侵袭和PTX敏感性的影响。这些数据表明mi R-449c-5p通过调控ABCC1介导卵巢癌细胞对PTX的耐药性。
因此本研究揭示了卵巢癌细胞耐PTX化疗的一种新机制,并说明了mi R-449c-5p可能是治疗卵巢癌的新靶点。然而本研究并没有探究ABCC1在卵巢癌细胞中调控PTX敏感性的机制,这点还需在后续的研究中说明。
参考文献:
[1]朱崇元,李艺.卵巢癌淋巴结转移影像学评估研究进展[J].中国妇产科临床杂志, 2023, 24(2):206-208.
[6]谢文阳,熊员焕,郭桃英. miR-574-3p通过下调CBX2增强了卵巢癌A2780细胞对紫杉醇的敏感性[J].沈阳药科大学学报,2022, 39(8):950-956.
基金资助:河南省医学科技攻关计划联合共建项目(LHGJ20210914); 新乡市科技攻关项目(GG2020041);
文章来源:高玉霞,王文翔,李章欢,等.MiR-449c-5p对卵巢癌细胞紫杉醇敏感性的影响及机制研究[J].中国妇产科临床杂志,2024,25(05):404-407.
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卵巢癌是死亡率最高的妇科恶性肿瘤,由于疾病早期缺少特异性症状及缺乏早期筛查手段,超过70%的卵巢癌患者诊断时疾病已进展至中晚期,丧失最佳诊疗机会[1]。卵巢浆液性囊腺癌是卵巢癌中最常见、最具侵袭性的亚型,约占卵巢癌所有组织学亚型的67.5%[2]。
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