91学术服务平台

您好,欢迎来到91学术官网!业务合作:91xueshu@sina.com,站长邮箱:91xszz@sina.com

发布论文

论文咨询

川楝素通过调控CDCA5表达对肺腺癌细胞体内外生长的抑制作用

  2024-04-15    36  上传者:管理员

摘要:目的 研究川楝素通过调控细胞分裂与周期相关蛋白5(CDCA5)的表达对肺腺癌细胞体内外生长的抑制作用。方法 用TCGA数据库分析CDCA5在不同肺组织中的表达情况;用蛋白质印迹法检测BEAS-2B细胞和A549细胞中CDCA5表达水平;用细胞计数试剂盒-8(CCK-8)法检测不同浓度川楝素对A549细胞的存活率的影响。将A549细胞随机分为4组,对照组为正常细胞正常培养;川楝素组为正常细胞加入40μmol·L-1川楝素培养;川楝素+pcDNA组和川楝素+CDCA5组分别在转染pcDNA空载体和CDCA5过表达载体后,加入40μmol·L-1川楝素培养。培养48 h后,用CCK-8和流式细胞术检测各组细胞增殖和凋亡情况,以蛋白质印迹法检测各组细胞增殖和凋亡相关蛋白的表达水平。将BALB/c裸鼠随机分组并构建sh-NC和sh-CDCA5稳转细胞株与裸鼠移植瘤模型,每日分别腹腔注射0.9%NaCl和40μmol·L-1的川楝素溶液,观察并记录肿瘤组织体积、体质量变化。结果 CCK-8结果显示:A549细胞经10、20、30、40、50、60、70μmol·L-1川楝素干预48 h后的存活率分别为(80.74±8.71)%、(72.96±6.53)%、(61.01±4.86)%、(51.20±3.13)%、(42.10±5.94)%、(38.93±3.18)%和(33.48±2.94)%,川楝素对A549细胞增殖具有显著的抑制作用。对照组、川楝素组、川楝素+pcDNA组和川楝素+CDCA5组的细胞增殖率分别为(100.00±4.19)%、(49.18±6.70)%、(55.75±5.74)%和(77.66±7.48)%,CDCA5蛋白相对表达水平分别为1.08±0.11、0.44±0.04、0.43±0.05、0.99±0.10。sh-NC组、sh-CDCA5组、川楝素+sh-NC组和川楝素+sh-CDCA5组裸鼠肿瘤组织中CDCA5蛋白相对表达水平分别为1.04±0.14、0.42±0.04、0.56±0.08、0.32±0.04。与sh-NC组相比,其他各组裸鼠形成的肿瘤块均明显减小、肿瘤体积和质量均明显下降(均P<0.05)。与川楝素+sh-NC组相比,川楝素+sh-CDCA5组对肿瘤形成的抑制作用更明显,在统计学上差异均有统计学意义(均P<0.05)。结论 川楝素对肺腺癌细胞在体内外的生长均具有抑制作用,主要与抑制CDCA5的表达有关。

  • 关键词:
  • 凋亡
  • 增殖
  • 川楝素
  • 细胞分裂周期相关蛋白5
  • 肺腺癌
  • 加入收藏

肺癌是一种恶性肿瘤,主要由小细胞肺癌和非小细胞肺癌组成,其中肺腺癌可占非小细胞肺癌总数的50%以上[1,2]。川楝素(toosendanin, TSN)是从传统中药苦楝子和川楝皮中提取出的一种萜类化合物,现代药理研究表明,川楝素具有驱虫、抗炎镇痛、抗肉毒素等作用,且能够抑制肿瘤细胞增殖和促进细胞凋亡,从而具有良好的抗肿瘤活性[3,4]。本文主要对川楝素对肺腺癌细胞体内外生长的抑制作用进行研究,并进一步探讨其潜在作用机制。


一、材料与方法


1 材料

动物6周龄的BALB/c裸鼠,体质量18~20 g, 购自南方医科大学。动物生产许可证号:SCXK(粤)2021-0041。本实验经濮阳医学高等专科学校动物实验伦理委员会批准(伦理批号:2023-0824)。

细胞株BEAS-2B人正常肺上皮细胞和A549人非小细胞肺癌细胞,均购自深圳市豪地华拓生物科技有限公司。

药品与试剂川楝素,纯度:≥98%,批号:111842-201804,成都普思生物科技有限公司生产。洛斯维·帕克纪念研究所(Roswell Park Memorial Institute-1640,RPMI-1640)完全培养基,上海雅吉生物科技有限公司生产;细胞计数试剂盒-8(cell coun-ting kit-8,CCK-8)试剂盒,武汉菲恩生物科技有限公司生产;Lipofectamine 3000转染试剂,北京索莱宝科技有限公司生产;Opti-MEM减血清培养基,北京博蕾德生物科技有限公司生产;pcDNA6/V5-His C,上海钰博生物科技有限公司生产;细胞凋亡试剂盒,杭州倍沃医学科技有限公司生产;细胞分裂周期相关蛋白5 (cell division cycle associated protein 5, CDCA5)、B淋巴细胞瘤-2(B-cell lymphoma-2,Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bcl-2-associated X,Bax)、剪切的胱天蛋白酶3(cleaved cysteine aspartic acid specific protease-3,Cl-caspase-3)抗体,均为美国CST公司生产;Ki67抗体,英国Abcam公司生产;二喹啉甲酸(bicinchoninic acid, BCA)蛋白浓度测定试剂盒,南京诺唯赞生物科技股份有限公司生产。CDCA5过表达载体的构建,由上海生工生物工程股份有限公司完成。

仪器BB150-2TCS CO2细胞培养箱,Multiskan FC酶标仪,均为美国赛默飞世尔科技公司产品;FACSVia流式细胞仪,美国BD公司产品;ZF-288全自动凝胶成像分析系统,上海嘉鹏仪器有限公司产品。

2 实验方法

2.1 细胞实验

2.1.1 细胞处理及蛋白质印迹法检测CDCA5的表达水平

取处于对数生长期的BEAS-2B细胞和A549细胞,从细胞提取总蛋白,用BCA蛋白检测试剂盒进行定量。用10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白,每孔上样量均为20 μg, 并转移到聚偏二氟乙烯膜上。在室温下用5%脱脂牛奶封闭1 h后,将膜浸泡在一抗溶液(1∶1 000)中4 ℃过夜孵育,然后在室温下用二抗(1∶2 000)孵育1 h。用全自动凝胶成像分析系统对信号进行可视化。以β-actin作为内参,对CDCA5蛋白的表达进行定量计算。

2.1.2 CCK-8法检测各组细胞存活率[5]5]

取对数生长期的A549细胞,加入96孔板中,过夜培养。加入终浓度为0、10、20、30、40、50、60、70 μmol·L-1的川楝素与A549细胞共培养,并分别在培养24、48、72 h时,向每孔中加入CCK-8试剂10 μL,用酶标仪测定在450 nm处的光密度值,计算细胞存活率。每组实验重复5次。

2.1.3 细胞转染与处置方法[6,7]6-7]

将A549细胞随机分为对照组、川楝素组、川楝素+pcDNA组和川楝素+CDCA5组,每组5个复孔。用Opti-MEM培养基分别稀释Lipofectamine 3000转染试剂、CDCA5过表达载体和pcDNA空载体,将稀释过的载体与转染试剂按比例混匀后培养细胞,培养6 h后,更换培养基终止转染。

对照组为正常细胞加入培养基培养;川楝素组为正常细胞加入含有40 μmol·L-1川楝素的培养基进行培养;川楝素+pcDNA组是在细胞转染入pcDNA空载体后,加入含有40 μmol·L-1川楝素的培养基培养;川楝素+CDCA5组为转染入CDCA5过表达载体的细胞,用含有40 μmol·L-1川楝素的培养基继续培养,均培养48 h。

2.1.4 CCK-8和流式细胞术检测川楝素对细胞存活率和凋亡率的影响[8,9]8-9]

取各组细胞,每孔加入CCK-8试剂10 μL,用酶标仪测定光密度,并计算细胞存活率。

取各组细胞,加入0.25%胰蛋白酶分离消化细胞,制备细胞悬液,向细胞悬液中加入Annexin V-异硫氰酸荧光素和PI混匀,室温避光染色15 min, 用流式细胞仪检测细胞凋亡情况。

2.1.5 蛋白质印迹法检测各组细胞CDCA5蛋白、增殖和凋亡相关蛋白的表达水平[10]10]

取各组细胞,裂解细胞后提取总蛋白,对提取的总蛋白用试剂盒进行定量检测。按照“2.1.1”中的方法检测CDCA5蛋白、增殖和凋亡相关蛋白的表达水平。

2.2 动物实验——检测肿瘤体积、质量变化和CDCA5蛋白表达情况[11,12]11-12]

将BALB/c裸鼠随机分为4组,分别为sh-NC组、sh-CDCA5组、川楝素+sh-NC组和川楝素+sh-CDCA5组,每组8只裸鼠。参照“2.1.3”方法构建sh-NC和sh-CDCA5稳转细胞株,分别将转染了空载体(sh-NC)和CDCA5沉默表达载体(sh-CDCA5)的细胞使用PBS处理制备细胞悬液,使细胞密度为3×107 cell·mL-1,分别将细胞悬液0.2 mL接种于裸鼠背部皮下位置,建立裸鼠皮下移植瘤模型。sh-NC组、sh-CDCA5组每日腹腔注射0.9%NaCl, 川楝素+sh-NC组和川楝素+sh-CDCA5组每日腹腔注射40 μmol·L-1的川楝素溶液,每日1次,持续15 d。成瘤后,每6 d测量一次肿瘤体积,4周后将裸鼠麻醉处死,剥离肿瘤组织并称重。用蛋白质印迹法对肿瘤组织的CDCA5蛋白表达水平进行检测。

2.3 癌症基因组图谱(The Cancer Genome Atlas, TCGA)数据库分析[13]13]

从TCGA数据库中查询并下载了347例正常肺组织样本和483例肺腺癌样本的CDCA5 mRNA数据,对其进行均一化处理,分析比较表达水平差异。

3 统计学处理

用SPSS 26.0软件进行统计分析。用表示,2组间差异用t检验比较,用单因素方差对多组间差异进行分析。


二、结果


1 川楝素对A549细胞存活率的影响

川楝素对A549细胞增殖具有显著的抑制作用,且呈剂量依赖,见表1。40 μmol·L-1川楝素作用于A549细胞48 h时,细胞存活率在50%左右,因此后续体外细胞实验均选用40 μmol·L-1川楝素作用于A549细胞48 h。

表1 川楝素对各组细胞存活率的影响

2 CDCA5在肺腺癌中的表达

TCGA数据库显示,CDCA5在肺腺癌组织(3.27±1.46)中的表达水平更高,与正常肺组织(1.36±0.72)比较,在统计学上差异有统计学意义(P<0.05)。蛋白质印迹实验结果显示,BEAS-2B和A549细胞中CDCA5蛋白相对表达水平分别为0.34±0.03和1.06±0.10(P<0.05)。

3 川楝素可通过CDCA5抑制A549细胞增殖和凋亡

对照组为正常细胞加入培养基培养;川楝素组为正常细胞加入含有40 μmol·L-1川楝素的培养基进行培养;川楝素+pcDNA组是在细胞转染入pcDNA空载体后,加入含有40 μmol·L-1川楝素的培养基培养;川楝素+CDCA5组为转染入CDCA5过表达载体的细胞,用含有40 μmol·L-1川楝素的培养基继续培养。

CCK-8结果显示,川楝素作用A549细胞后可明显降低细胞的增殖率(P<0.05),并明显升高细胞的凋亡率(P<0.05)。与川楝素+pcDNA组相比,川楝素+CDCA5组细胞在CDCA5过表达的情况下,细胞增殖率明显升高(P<0.05),细胞凋亡率明显下降(P<0.05),见表2。

4 川楝素通过CDCA5对A549细胞增殖和凋亡相关蛋白表达的影响

与对照组相比,川楝素组CDCA5蛋白、Ki67蛋白和Bcl-2蛋白相对表达水平均明显降低(均P<0.05),Bax蛋白和Cl-caspase-3蛋白相对表达水平均明显上升(均P<0.05)。与川楝素+pcDNA组相比,川楝素+CDCA5组细胞中DCA5蛋白、Ki67蛋白和Bcl-2蛋白相对表达水平均明显升高(均P<0.05),而Bax蛋白和Cl-caspase-3蛋白相对表达水平均明显降低(均P<0.05),见表3。

5 川楝素在体内抑制肿瘤生长

sh-NC组、sh-CDCA5组每日腹腔注射0.9%NaCl, 川楝素+sh-NC组和川楝素+sh-CDCA5组每日腹腔注射40 μmol·L-1的川楝素溶液,每日1次,持续15 d。

随着时间的增加,各组肿瘤组织体积呈现增长趋势,见表4。

表2 川楝素通过CDCA5对A549细胞增殖和凋亡的影响

表3 川楝素通过CDCA5对A549细胞增殖和凋亡相关蛋白的影响

表4 川楝素对肿瘤体积变化的影响

表5 川楝素对CDCA5蛋白表达和肿瘤质量变化的影响

sh-NC组肿瘤体积和质量最大,与sh-NC组相比,其他各组裸鼠肿瘤组织中CDCA5蛋白相对表达水平明显降低,肿瘤体积和质量均明显下降(均P<0.05)。与川楝素+sh-NC组相比,Toosendanin+sh-CDCA5组CDCA5蛋白相对表达水平更低,肿瘤体积和质量更低,对肿瘤形成的抑制作用更明显,在统计学上差异均有统计学意义(均P<0.05)。结果见表4和表5。


三、讨论


本实验结果证实,川楝素可以明显抑制A549细胞增殖,且具有剂量依赖性。同时,本研究结果发现,川楝素作用后会明显下调CDCA5蛋白的表达水平,说明川楝素对于非小细胞肺癌细胞增殖的抑制作用可能与CDCA5蛋白的表达有关。

本实验结果发现,当CDCA5蛋白过表达时,会明显增加A549细胞的增殖率,抑制细胞凋亡,调控增殖和凋亡相关蛋白的表达。在体外实验结果中也发现,在抑制CDCA5蛋白表达的基础上,加以川楝素治疗,对肿瘤组织的抑制作用更明显,进一步验证了实验结果的准确性。

本研究提示:川楝素可通过抑制CDCA5蛋白的表达明显抑制A549细胞的增殖,促进细胞凋亡;且通过体内实验可以看出,川楝素作用可抑制CDCA5的表达从而抑制肿瘤组织的形成。


参考文献:

[2]杜凤华,闵旭红,梅晓冬.肺腺癌靶向治疗药物的应用及耐药机制[J].临床肺科杂志,2018,23(1):168—172.

[3]李锡丁,周永平,李旻昊,等.川楝素对胃癌细胞糖酵解效应的影响及相关机制[J].江苏大学学报(医学版),2021,31(6):501-505,510.

[4]王昆阳,聂安政.中药川楝子药理毒理探讨与合理用药思考[J].中华中医药学刊,2022,40(3):54—58.

[5]刘盛楠,邵淑丽,王维熠,等.川楝素诱导人肺癌A549细胞凋亡[J].中国细胞生物学学报,2015,37(8):1087—1094.

[6]李柏.姜黄素通过miRNA-491/PEG10对结直肠癌细胞系HCT116增殖及凋亡作用机制的研究[D].吉林长春:吉林大学,2020.

[7]曹敏,张晓敏,王培昌,等.Homer1基因真核表达重组质粒构建及HT22细胞转染鉴定[J].山东医药,2020,60(22):44—47.

[8]张洁.番茄碱通过AMPK/COX-2通路调控食管癌细胞凋亡的机制研究[J].中国临床药理学杂志,2023,39(16):2348—2352.

[9]林少泽,王聪仁.人参皂苷Rb1介导线粒体自噬途径对肝癌细胞凋亡的影响[J].中国临床药理学杂志,2023,39(12):1713—1717.

[10]任静宇,范玲玲,段冷昕等.常春藤皂苷通过活性氧-p38/JNK通路调控食管鳞癌细胞迁移和凋亡的研究[J].中国临床药理学杂志,2023,39(8):1147—1151.

[12]李少儒,李燕,户瑞丽,等.川楝素抑制裸鼠卵巢癌生长和促进肿瘤细胞凋亡[J].基础医学与临床,2019,39(7):1031—1035.

[13]朱文斌,张微,刘立琨,等.乳腺癌细胞PCDH10基因启动子甲基化与信使RNA表达相关性研究[J].中国临床药理学杂志,2021,37(10):1205—1208,1213.


文章来源:张志成,苏丽霞,孟瑞玲,等.川楝素通过调控CDCA5表达对肺腺癌细胞体内外生长的抑制作用[J].中国临床药理学杂志,2024,40(07):994-998.

分享:

91学术论文范文

相关论文

推荐期刊

网友评论

加载更多

我要评论

中国癌症杂志

期刊名称:中国癌症杂志

期刊人气:1958

期刊详情

主管单位:中华人民共和国教育部

主办单位:复旦大学附属肿瘤医院

出版地方:上海

专业分类:医学

国际刊号:1007-3639

国内刊号:31-1727/R

邮发代号:4-575

创刊时间:1991年

发行周期:月刊

期刊开本:大16开

见刊时间:一年半以上

论文导航

查看更多

相关期刊

热门论文

【91学术】(www.91xueshu.com)属于综合性学术交流平台,信息来自源互联网共享,如有版权协议请告知删除,ICP备案:冀ICP备19018493号

400-069-1609

微信咨询

返回顶部

发布论文

上传文件

发布论文

上传文件

发布论文

您的论文已提交,我们会尽快联系您,请耐心等待!

知 道 了

登录

点击换一张
点击换一张
已经有账号?立即登录
已经有账号?立即登录

找回密码

找回密码

你的密码已发送到您的邮箱,请查看!

确 定